phaneropsolus-philanderi-caballero-et-grocott-1952 Хозяин: опоссум — Philander laniger pallidus. Локализация: тонкая кишка. Место обнаружения: Центральная Америка...
phaneropsolus-oviformis-poirier-1886 Синонимы: Distomum oviforme Poirier, 1886; Phaneropsolus bonnei Lie-Kian-Joe, 1951; Ph. simiae Yamaguti, 1954; Primatotrema macacae Premvati,...
phaneropsolus-orbicularis-diesing-1850 Синоним: Distoma orbiculare Diesing, 1850. Хозяева: обезьяны — Saimiri sciurens, S. verstedi, Nyctipithecus...
phaneropsolus-longipenis-looss-1899 Хозяин: обезьяна, вид неизвестен. Локализация: средняя кишка. Место обнаружения: ОАР. Описание вида (по Looss, 1899). Тело...
phaneropsolus-lakdivensis-fernando-1933 Хозяин: лори — Loris tardigradus. Локализация: тонкая кишка. Место обнаружения: Цейлон. Описание вида (по Fernando,...
phaneropsolus-alternans-capron-deblock-et-brygoo-1961 Хозяева: хамелеоны — Chamaeleon lateralis, Ch. guentheri, Ch. oustaleti, Ch. pardalis, Ch. parsonii, Ch. verrucosus. Локализация:...
phaneropsolus-micrococcus-rudolphi-1819 Синонимы: Distomum micrococcum Rudolphi, 1819; Phaneropsolus sigmoideus Looss, 1899. Хозяева: птицы — Glareola austriaca,...
tablitsa-dlja-opredelenija-vidov-roda-phaneropsolus Паразиты кишечника рептилий, птиц и млекопитающих. Распространение: тропическая или субтропическая зоны земного шара — Южная...
opisanie-roda-phaneropsolus Имеющиеся между этими видами незначительные различия укладываются в рамки внутривидовой изменчивости. Напротив, Ph. lakdivensis и Ph. oviformis...
rod-phaneropsolus-looss-1899 Синоним: Primatotrema Premvati, 1958 Историческая справка Род Phaneropsolus был создан в 1899 г. Лооссом (Looss) для описанных им...

Изготовление и изучение временных препаратов

Изготовление и изучение временных препаратов

Для определения мелких животных, изучения их морфологии и зарисовок используется микроскоп или бинокуляр. При этом обычно животные помещаются на предметное стекло и накрываются покровным стеклом, то есть готовится временный микропрепарат. Методика изготовления постоянных препаратов довольно сложна и излагается в специальных руководствах, например, /3/. Там же можно более подробно ознакомиться с правилами работы с микроскопом.

При изготовлении препарата объект помещается в каплю воды на предметное стекло. Количество воды должно быть таким, чтобы она заполнила все пространство под покровным стеклом, но не вытекала из-под него. Лишнюю воду убирают пипеткой или куском марли. Накрывать препарат стеклом нужно так, как показано на рис. 10 — прикоснувшись к капле одним краем, а затем постепенно опуская другой край. При этом уменьшается риск попадания под стекло пузырьков воздуха, которые мешают изучать объект.

Накрывание препарата покровным стеклом

Рис. 10. Накрывание препарата покровным стеклом

Для многих животных необходимо использовать покровное стекло с ножками — иначе они раздавятся под тяжестью стекла. Ножки проще всего сделать из пластилина.

Для этого каждым уголком покровного стекла проводят несколько раз по куску пластилина, пока не получится ножка нужной высоты. Иногда целесообразно сделать две ножки с одной стороны стекла, которое в этом случае ложится наклонно: животные втягиваются в узкую щель и застревают там, что позволяет их лучше рассмотреть. Если пластилина нет, в качестве ножек можно подложить под стекло кусочки ниток или расщепленные соломинки.

Одна из главных проблем при рассматривании живых объектов — их подвижность. Основной способ ее решения — регулирование ширины просвета между предметным или покровным стеклом. Оно достигается либо отсасыванием воды из-под покровного стекла (для этого к его краю прикасаются кусочком фильтровальной бумаги или марли), либо регулировкой толщины ножек (можно очень осторожно надавливать сверху на покровное стекло).

Вторая проблема — часто препараты засыхают до того, как работа завершена, и объект оказывается безнадежно испорчен. Предотвращает высыхание глицерин. Если объект нужно сохранить в течение нескольких часов, то достаточно добавить каплю глицерина к краю покровного стекла (так, чтобы он смешался с водой под стеклом). Если речь идет о нескольких сутках — объект нужно перевести в чистый глицерин. Для сохранения формы при этом нужно перенести его из воды сначала в смесь равных количеств воды и глицерина, затем в смесь 2/3 глицерина и 1/3 воды и, наконец, заключить в глицерин. Если предполагается хранить препарат более длительное время (недели или месяцы), наиболее простой способ — заключение в глицерин-желатин. Для его приготовления 7 г желатина размачивают 2-3 часа в воде; затем, слив воду, добавляют 42 мл горячей дистиллированной (кипяченой) воды, 50 г глицерина и 0,5 г кристаллической карболовой кислоты, нагревают смесь на водяной бане, фильтруют через ткань или вату и остужают (при этом глицерин-желатин застывает). При приготовлении препарата кусочек глицерин-желатина кладут на предметное стекло, которое слегка нагревают на спиртовке. В расплавившийся глицерин-желатин переносят объект из глицерина и накрывают покровным стеклом.

При изучении препаратов важную роль играет чистота оптики и стекол. Оптику следует накрывать пакетом, предохраняющим от пыли; перед началом работы окуляры и объективы протереть мягкой тканью (если они сильно загрязнены, предварительно ее можно смочить спиртом). Нельзя касаться стеклянных частей оптики руками! Препараты длительно хранить только в закрытых коробках.

Другой важнейший залог успеха — правильное освещение. Практически всегда препараты просматривают под микроскопом на просвет. Свет при этом должен быть достаточно ярким и в то же время равномерно рассеянным по полю зрения. Практически всегда для направления пучка света в оптическую систему микроскопа следует использовать вогнутую сторону зеркальца. Микроскописты-профессионалы используют в качестве источника света специальные осветители. В работе школьников или студентов удобно использовать матовую лампу в 60 ватт. Если используется обычная лампа или солнечный свет, рекомендуется вставлять в конденсор белое матовое стекло (если его нет — кружок из полупрозрачной бумаги или полиэтилена). Свет нужно налаживать при полностью поднятом конденсоре, а затем, опуская его, добиться нужной контрастности изображения.

При отсутствии электричества и слабом естественном освещении хорошим источником света служат бензиновые или керосиновые лампы с каталитической сеткой.

Еще интересные статьи по теме:
Наземные брюхоногие моллюски Подмосковья
Наземные брюхоногие моллюски Подмосковья Наземные улитки (как видно из названия группы) в вод
О сборе и разборе проб макробентоса
О сборе и разборе проб макробентоса Макробентос — это беспозвоночные животные длиной 2
Ключ для определения семейств и большинства родов
Ключ для определения семейств и большинства родов 1. Раковина наружная, завитая в спиральную
Стрекозы (Odonata)
Стрекозы (Odonata) 1. Личинки с тонким стройным телом и 3-мя плоскими жабрами на конце б
Общие замечания к оформлению работы.
Общие замечания к оформлению работы. Работа должна быть аккуратно написана или напечатана на
Класс Двустворчатые моллюски — Bivalvia.
Класс Двустворчатые моллюски — Bivalvia. Определитель семейств и некоторых родов. В