phaneropsolus-philanderi-caballero-et-grocott-1952 Хозяин: опоссум — Philander laniger pallidus. Локализация: тонкая кишка. Место обнаружения: Центральная Америка (Панама). ...
phaneropsolus-oviformis-poirier-1886 Синонимы: Distomum oviforme Poirier, 1886; Phaneropsolus bonnei Lie-Kian-Joe, 1951; Ph. simiae Yamaguti, 1954; Primatotrema macacae Premvati, 1958;...
phaneropsolus-orbicularis-diesing-1850 Синоним: Distoma orbiculare Diesing, 1850. Хозяева: обезьяны — Saimiri sciurens, S. verstedi, Nyctipithecus trivirgatus. Лок...
phaneropsolus-longipenis-looss-1899 Хозяин: обезьяна, вид неизвестен. Локализация: средняя кишка. Место обнаружения: ОАР. Описание вида (по Looss, 1899). Тело разме...
phaneropsolus-lakdivensis-fernando-1933 Хозяин: лори — Loris tardigradus. Локализация: тонкая кишка. Место обнаружения: Цейлон. Описание вида (по Fernando, 1933)....
phaneropsolus-alternans-capron-deblock-et-brygoo-1961 Хозяева: хамелеоны — Chamaeleon lateralis, Ch. guentheri, Ch. oustaleti, Ch. pardalis, Ch. parsonii, Ch. verrucosus. Локализация: пе...
phaneropsolus-micrococcus-rudolphi-1819 Синонимы: Distomum micrococcum Rudolphi, 1819; Phaneropsolus sigmoideus Looss, 1899. Хозяева: птицы — Glareola austriaca, Caprimulgu...
tablitsa-dlja-opredelenija-vidov-roda-phaneropsolus Паразиты кишечника рептилий, птиц и млекопитающих. Распространение: тропическая или субтропическая зоны земного шара — Южная Европа,...
opisanie-roda-phaneropsolus Имеющиеся между этими видами незначительные различия укладываются в рамки внутривидовой изменчивости. Напротив, Ph. lakdivensis и Ph. oviformis обл...
rod-phaneropsolus-looss-1899 Синоним: Primatotrema Premvati, 1958 Историческая справка Род Phaneropsolus был создан в 1899 г. Лооссом (Looss) для описанных им вид...
pitbul-zaprygnul-vverh-pochti-na-45-metra-po-vertikalnoj-stene Посмотрите видео как питбуль допрыгнул до предмета на высоте 14 футов (4, 27 метра)! Если бы проводилась собачья Олимпиада, то этот питбуль точ...
morskaja-svinka-pigi-zhelaet-vsem-schastlivogo-dnja-svjatogo-patrika С днем Святого Патрика ВСЕХ! И ирландцев и не только ирландцев!
ryba-igla Родиной уникальной пресноводной рыбы-иглы является Индия, Цейлон, Бирма, Тайланд, Малайский полуостров. Достигают 38 см в длину. Принадлежит к семе...
botsija-kloun Считается, что рыбка боция-клоун (Botia macracantha) появилась в середине XIX века. О данном виде впервые упомянул Питер Бликер (голландский медик,...
gjurza Гюрза (Vipera lebetina) – крупная змея, которая имеет притупленную морду и резко выступающие височные углы головы. Сверху голова змеи покрыта...

Особенности сбора и сохранения живого материала

Особенности сбора и сохранения живого материала

Многие наблюдения за поведением, размножением и другими сторонами биологии пресноводных организмов можно провести только в лаборатории. Определять многие виды тоже лучше в живом состоянии, чем после фиксации (например, предпочтительно определение в живом состоянии коловраток и протистов). В прижизненном состоянии, как правило, определяют плодовитость ветвистоусых ракообразных (см. наст.сборн., "Задания по экологии зоопланктона") и зарисовывают их внутреннее строение.

Для всех этих целей необходимо собрать, донести до лаборатории и сохранить живой материал. Для этого необходимо выполнять ряд правил.

В обычных орудиях лова (сачок, планктонная сеть) многие организмы повреждаются. Особенно это касается ракообразных с нежными покровами, и особенно в тех случаях, когда они оказываются (даже на короткое время) вне воды. Поэтому лучше, подведя сачок к повехности, зачерпнуть из него животных банкой (а если это возможно — зачерпнуть пробу банкой прямо из водоема).

Травмирующей может оказаться и сильная струя воды. Если вы хотите, чтобы животные из улова батометра или планктонной сетки остались живыми, воду нужно сливать в сосуд, до половины заполненный водой, причем с небольшой высоты.

Лучший способ пересаживания большинства животных из одного сосуда в другой — с помощью резиновой груши (медицинская клизма), в которую вдета стеклянная или пластиковая трубка подходящего диаметра (обычно делается из лабораторных мерных пипеток). Животное нужно осторожно засосать в трубку (но не внутрь груши!), а затем выпустить, держа конец трубки ниже уровня воды. Животных с более плотными покровами (насекомых и их личинок, моллюсков) можно вынимать из сачка руками или мягким пинцетом.

Значительная часть животных гибнет в ходе транспортировки — особенно в тех случаях, когда посуда с ними испытывает сильную тряску. Банку с живой пробой следует нести на обвязке в руке, а не в сумке. Следует избегать попадания в пробу с планктонными животными минеральных частиц — песка и глины со дна водоема.

Следующая причина гибели животных — недостаток кислорода. Он может вызываться разными причинами. Во-первых, часто пытаются сохранить в банке весь улов, не задумываясь над тем, во сколько раз плотность популяций оказывается выше, чем в природе. "Густые" пробы нужно обязательно разбавлять (сразу после взятия или после доставки в лабораторию). Другая возможная причина — закрытая крышка посуды. Держать закрытыми живые пробы нельзя. Наконец, возможная причина гибели от нехватки кислорода — большое количество разлагающейся органики в банке. Часто это трупы погибших животных. Их со дна банки нужно сразу же удалять. Чтобы увеличить доступ кислорода, можно вылить пробу (осторожно, без сильного перемешивания!) из банки в более широкий сосуд (кювету, кристаллизатор), где слой воды будет толщиной 2-3 см. Наконец, при длительном содержании многих животных в аквариуме (которое мы подробно не описываем, так как оно описано в многочисленных руководствах по аквариумистике) может потребоваться аэратор.

Не менее распространенная причина гибели животных — высокая температура (при которой также уменьшается содержание кислорода в воде). Пробу ни в коем случае нельзя оставлять на солнце. Наиболее подходящее место для ее хранения — самая прохладная часть помещения, погреб или нижняя полка холодильника. Для охлаждения можно обернуть банки с пробами мокрой марлей или поставить их в более широкий сосуд с водой и регулярно ее сменять (эти способы применимы и при транспортировке).

Животные могут поедать и калечить друг друга в пробе. Особенно опасны для большинства животных крупные пиявки, клопы-гладыши, жуки-плавунцы и их личинки. Если вас интересуют животные определенного вида, лучше сразу отсадить их в отдельную посуду (причем хищных животных, особенно разного размера — поодиночке).

Хотя многие беспозвоночные довольно устойчивы к голоданию, при длительном содержании их приходится кормить. Некоторые мелкие ракообразные, а также активные хищники гибнут без пищи уже через сутки-двое. При выборе объектов для длительного эксперимента следует заранее подумать, сможете ли вы обеспечить их кормом, и позаботиться о его постоянном наличии.

Многие пресноводные животные переносят широкие колебания рН, жесткости и других показателей, связанные с химическим составом воды. И все-таки вероятность их гибели меньше, если вода взята из их "родного" водоема. Если такая возможность есть, лучше запастись этой водой, профильтровав ее через мелкий газ или несколько слоев марли. Воду из водопровода или колонки нужно отстаивать не менее суток (лучше — дольше). При этом, в частности, за счет деятельности бактерий может образоваться поверхностная пленка, которая препятствует прилипанию ракообразных к поверхности (обычная причина гибели ветвистоусых в лаборатории). Если водоем, на котором проводятся исследования, малопосещаем, то можно попытаться содержать животных прямо в нем, соорудив для них подходящий садок.

Частая причина гибели животных — попадание в пробы ядовитых веществ. Противокомариные репелленты ядовиты практически для всех пресноводных животных. В лаборатории, где есть живые пробы, пользоваться ими нельзя, а руки после их применения нужно мыть. Пипетки и другие инструменты, которые использовались при работе с формалином, должны быть помечены и храниться отдельно от "живых". Тем более, в помещении с живыми планктонными рачками не должно быть никаких открытых емкостей с формалином (зафиксированных проб и т.п.).

Еще интересные статьи по теме:
Изготовление и изучение временных препаратов
Изготовление и изучение временных препаратов Для определения мелких животных, изучения их мор
Поденки (Ephemeroptera)
Поденки (Ephemeroptera) 1. Жабры двойные перистые (каждая имеет два ствола, оперенных боковым
Примерная комплектация коллективной аптечки
Примерная комплектация коллективной аптечки Приведенный перечень рассчитан на группу из 20 че
Фиксация и хранение проб
Фиксация и хранение проб Для длительного хранения материала пробы помещают в фиксатор —
Количественные орудия лова
Количественные орудия лова Для оценки численности (плотности популяций) планктонных животных
Двукрылые (Diptera)
Двукрылые (Diptera) Определение приводится только для личинок. Куколки у комаров имеют зачатк